Control del moho blanco en la soja

Moho blanco, causado por Sclerotinia sclerotiorum, es una enfermedad grave en varios cultivos, capaz de provocar pérdidas de hasta el 70% en cultivos de soja. La propagación suele producirse a través de la propia semilla infectada, por lo que detectar la presencia de micelio en estos materiales, posible con la ayuda de un laboratorio especializado, es fundamental para prevenir daños.

La enfermedad conocida como moho blanco, causada por el hongo Sclerotinia sclerotiorum, es responsable de importantes pérdidas en numerosos cultivos agrícolas de importancia económica en el mundo. Los daños varían según los niveles de susceptibilidad de los cultivos, las condiciones climáticas y el manejo adoptado. El primer reporte de la enfermedad en Brasil fue en 1921, en el cultivo de papa. Actualmente, el patógeno afecta al frijol, la soja, el girasol, el algodón, la canola, la papa, el tomate y la lechuga en varias regiones productoras del país. El moho blanco es una enfermedad causada por el hongo. Sclerotinia sclerotiorum y, según los resultados de ensayos cooperativos de control químico de las últimas seis cosechas, provoca reducciones promedio del 21% en la productividad de la soja, llegando hasta el 70% en algunos cultivos aislados. Según relevamientos realizados por la Empresa Nacional de Abastecimiento (Conab) en la cosecha 2015/16, y considerando las regiones con mayor incidencia de la enfermedad en el país, se estima que el área de producción de soja infestada por S. esclerotiorum es de aproximadamente 7,7 millones de hectáreas. Como el moho blanco es una enfermedad que afecta a varios otros cultivos, es de fundamental importancia observar la secuencia de cultivos en la sucesión de cultivos en áreas infestadas con el hongo, intercalando cultivos no hospedantes como estrategia para reducir el inóculo del patógeno. . También se deben adoptar de manera integrada otras medidas de manejo del moho blanco, como el uso de semillas de buena calidad tratadas con fungicidas adecuados; formación de paja para una cobertura uniforme del suelo, preferiblemente de pastos; la elección de cultivares con una arquitectura vegetal que favorezca una buena aireación entre plantas (pocas ramificadas y con hojas pequeñas) y con un periodo de floración más corto; población de plantas y espacio entre hileras adecuado para los cultivares; uso de control químico, mediante aspersiones foliares, principalmente durante el período de mayor susceptibilidad de la planta de soja (inicio de floración hasta inicio de formación de vainas); uso de control biológico, mediante la propagación de agentes antagonistas en el suelo; y limpiar máquinas y equipos después de su uso en un área infestada para prevenir la propagación de esclerocios (JULIATTI et al.2010).

La propagación del moho blanco en los cultivos suele producirse a través de la propia semilla infectada. Aunque los esclerocios se detectan fácilmente en los lotes de semillas, es poco probable que se detecte el micelio sin la ayuda de un laboratorio especializado.

Los criterios utilizados para detectar hongos en semillas, en general, consisten en estimular a los microorganismos para que produzcan estructuras, o metabolitos, que permitan su identificación. Para el hongo S. esclerotiorum, la observación visual de la presencia de esclerocios se realiza mediante la prueba del papel de filtro (prueba de papel secante). El método Neon-S también se utiliza para detectar este patógeno en semillas de soja y frijol desde la cosecha 2010. Este método consiste en agregar un indicador de pH (azul de bromofenol) al medio de cultivo y se basa en la formación de un halo amarillo. alrededor de la semilla debido a la presencia de ácido oxálico producido por el hongo, que acidifica el ambiente cambiando su color. Sin embargo, este método puede dar lugar a lecturas falsas positivas debido a la aparición de otros hongos que también pueden alterar el pH del medio. En este sentido, se han desarrollado varios trabajos y/o ajustado metodologías con el fin de minimizar algunos problemas en las pruebas ya establecidas como estándar. Los métodos alternativos, como el rollo de papel modificado y el método Neon-S modificado, se han mostrado prometedores para un diagnóstico más seguro y rápido del patógeno.

637 muestras/lotes de semillas de soja y frijol, provenientes del Triângulo Mineiro y Alto Paranaíba (Figura 1), cubriendo el período de 2008 a 2012. El objetivo fue verificar si el aumento del período de incubación podría contribuir a optimizar la confiabilidad del Neon- Prueba S.

Se compararon tres métodos de detección: rollo de papel, Neon-S y Neon-S2 (prueba Neon-S modificada, cambiando el tiempo de lectura de siete a 15 días). Se utilizaron semillas del cultivar de frijol Pérola y de los cultivares de soja BRS Valiosa RR y Nidera 7255 RR. Los lotes de semillas se infectaron de forma natural, a excepción del cultivar Nidera 7255 RR, que tuvo sus semillas expuestas a la infección por el patógeno en cajas de Petri durante 72 horas.

La técnica del rollo de papel no permitió detectar la presencia de moho blanco en semillas de soja recolectadas en 2008 y, para otros cultivos, presentó una menor capacidad de detección del patógeno en comparación con Neon-S2 (21,88 y 31,25 % de muestras positivas, respectivamente). ). A pesar de la sensibilidad de detección de S. esclerotiorum en lotes de semilla fue mayor para el método Neon-S2 en relación al método de rodillo, la diferencia no fue significativa al compararlo con el método Neon S, aunque numéricamente el porcentaje de incidencia del método modificado fue mayor (Figura 2). Aún así, la detección de S. esclerotiorum el uso del método Neon-S2 es más confiable debido a la incubación durante 15 días, ya que la formación de esclerocios, durante este período, cerca de las semillas infectadas, confirma la presencia del patógeno y evita lecturas falsas positivas.

La importancia de este método de detección implica una mejor planificación de la propiedad, como elegir lotes de semillas libres del patógeno y orientar un tratamiento de semillas más adecuado que incluya fungicidas específicos para el hongo. Sclerotinia sclerotiorum. De esta manera, el agricultor podrá elegir el mejor tratamiento y el mejor lote de semillas para cada situación, evitando futuras malas cosechas o contaminación de una zona libre del patógeno y enfermedad. Si esta estrategia se hubiera utilizado en Brasil en los últimos años, seguramente habría habido una superficie menor contaminada con el hongo, que cubre más de 7,7 millones de hectáreas. La red de laboratorios que brindan este tipo de servicio es pequeña, pero vale la pena evaluar los lotes de semillas antes de comprarlos si el servicio está disponible en la región. Resaltando la importancia de verificar la calidad de las semillas y que las muestras deben ser representativas, una muestra estándar debe tener una alícuota de un kilo, envasada en bolsas de papel. LAMIP UFU es capaz de realizar pruebas de detección de Sclerotinia sclerotiorum y emitir informes que acrediten la calidad sanitaria de los principales cultivos cultivados en Brasil. Para hacerlo, es necesario enviar los lotes identificados a Avenida Amazonas S/N, Bloco 2E, sala 106, Jardim Umuarama, Uberlândia, Minas Gerais, CEP 38400 - 902. El costo por muestra ronda los R$ 100,00.  

Fernando Cezar Juliatti, Roberto Resende dos Santos y Tâmara Prado de Morais, Lamip - Univ. Reserva Federal de Uberlândia

Artículo publicado en el número 213 de Cultivar Grandes Culturas.